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1.配制所需的溶液:
a. 细胞培养基:RPMI 1640+10% FBS+1% P/S;
b. 细胞冻存液:FBS中加入10%DMSO;
2.将10ml全血转入50ml离心管中,加入10ml PBS溶液稀释,轻轻混匀;
3.取两支15ml离心管,先加入5ml Ficoll溶液。然后将稀释的血液轻轻加到两支离心管的ficoll上层,一定要轻柔,避免两种溶液混合在一起,每只离心管各10ml稀释血液;
4.2,000rpm,20min,注意,降速设置中一定要设置成no break,或者只有1-2成的制动。离心完毕将得到如图所示分层;
5.PBMC所在细胞层为白色。此时可以用吸管将该层细胞吸取在另一干净的15ml离心管中。
6.加入PBS至10-15ml,1,500rpm,10min离心后去掉上清,再加入培养基进行相同操作的清洗;
7.加入5-10ml培养基重悬细胞,进行后续计数培养或者铺板;
8.细胞冻存:将细胞离心收集之后,用细胞冻存液重悬。取1-1.5ml细胞至冻存管中,放入冻存盒(冻存盒可事先在4℃冰箱预冷)。再将冻存盒放置于-80℃冰箱过夜。第二天将细胞转入液氮中长期保存。
备注:
(1)全血溶液可以加在Ficoll上层或者下层,但是最终都必须保证两种溶液分层清晰。
(2)分离PBMC第一步离心的时候,一定不能设置或设置低水平的制动。否则将分层混乱。
二、脱落细胞样本
在临床工作中,可以收集到大量自然脱落细胞,这些细胞标本经过简单处理,便可成为较好的单细胞悬液制备供流式细胞术分析。主要包括脱落细胞、胸腹水细胞、尿液、内镜刷检细胞等。
(一)食管拉网细胞的单细胞悬液的制备
1.将食管拉网器上的细胞洗脱到20ml PBS液中,以1500r/min离心后,再用PBS液洗2次,离心500~800r/min,1~2min,弃上清;
2.再加入PBS液5ml,以300目尼龙滤网过滤,离心沉淀去上清;
3.加少许PBS液混匀沉淀细胞,加固定液或低温保存,备用。
(二)尿液脱落细胞的单细胞悬液的制备
1.用以清洁器皿收集24h尿液,置4℃冰箱中自然沉淀2h,轻轻倒去上清液,留下少许带细胞的沉淀物,用吸管移至10~20ml离心管中;
2.500r/min离心10min,去上清;
3.加PBS液8~10ml,以1000r/min离心10min,去上清,重复再洗1次;
4.再加5ml PBS液混匀,用300目尼龙滤网过滤,离心沉淀去上清;
5.再加少许PBS液,混匀。加固定液或低温保存,备用。
(三)胸、腹水脱落细胞的制备
1.抽取胸、腹水50~100ml,加入1000U/ml肝素液1ml,放盐水瓶中置于4℃冰箱中静置6~12h,弃去上清;
2.将底部10~20ml用长吸管移入试管中,用PBS液洗3次,以1500r/min离心沉淀5min;
3.再加5ml PBS液混匀,用300目尼龙滤网过滤,离心沉淀去上清;
4.加少许PBS液,混匀;加固定液或低温保存,备用。
(四)冲洗液细胞样品的制备
1.用300~500ml生理盐水冲洗膀胱,冲洗一定时间后,吸出冲洗液放入容器中于冰箱内置6~12h;
2.取沉淀液20~40ml,离心沉淀并以生理盐水洗2次,吸上清;
3.加10ml PBS液,混匀,以300目尼龙滤网过滤,离心沉淀去上清;
4.过滤后1000r/min,10min,离心沉淀,去上清;加固定液或低温保存备用。
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