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Cell Stem Cell|comBO构建完整骨-造血复合微环境!

时间:2026-10-29 阅读:123
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期刊名称:CellStemCell

发表时间:2026年3月5日

核心:建立一套hiPSC来源、可高通量制备、同时包含成骨龛+血管+淋系+髓系造血区室的人源骨髓复合类器官(comBO);搭建多发性骨髓瘤嵌合类器官模型,并在模型中验证MIF炎症轴为骨髓瘤可靶向治疗靶点。

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核心研究思路与整体设计框架


1.总技术路线逻辑

①以人诱导多能干细胞(hiPSC)为起始原料,在生理低氧环境下序贯施加细胞因子诱导分化,结合颗粒状微凝胶三维支架,一次性同步诱导出血管、成骨基质、淋系造血、髓系造血四大细胞区室;

②完成类器官形态、分子、功能鉴定后,植入患者原代骨髓瘤细胞构建嵌合疾病模型;

③通过单细胞转录组+细胞互作分析筛选关键通路,再利用药物干预+基因敲除完成靶点因果验证。


2.分阶段实验框架

阶段1:comBO类器官定向分化构建:hiPSC序贯中胚层诱导→造血+基质多谱系同步分化→颗粒状微凝胶三维包埋培养;核心任务:实现骨、血管、淋系、髓系多谱系同步发育。

阶段2:类器官质控与体系优化:对比颗粒微凝胶与传统块状水凝胶;核心任务:建立高通量、高重复性的规模化制备方案。

阶段3:体外功能学验证:连续传代造血潜能测试、T细胞体外成熟验证、动态血流血管发育实验;核心任务:证明comBO具备长期维持造血干细胞、支持淋巴细胞发育的生理功能。

阶段4:疾病嵌合模型构建:植入多发性骨髓瘤患者CD138+原代浆细胞,建立MM-comBO嵌合类器官;核心任务:复刻骨髓瘤骨髓微环境重塑、骨质破坏、炎症活化等病理表型。

阶段5:机制挖掘与靶点验证:单细胞转录组+CellChat细胞互作分析筛选MIF通路;使用小分子抑制剂+CRISPR基因敲除完成功能验证;核心任务:明确MIF是骨髓瘤炎症微环境的关键驱动因子。


实验方法与关键操作要点


模块1:comBO类器官诱导分化(核心构建环节)

1.操作周期与时间节点

中胚层诱导:0~20天,全程5%O₂生理低氧培养;

淋系定向诱导:第10天切换细胞因子;

造血+基质谱系成熟:第21天完成多谱系初步形成;

终末成熟:第21~35天转入20%常氧继续培养。

2.核心试剂与关键材料

细胞:KOLF2.1JhiPSC细胞系;

三维支架:颗粒状微凝胶(机械破碎块状水凝胶制备);

关键细胞因子:髓系诱导因子、IL-7(淋系发育核心因子);

培养板:96孔超低吸附培养板。

3.核心操作步骤

低氧(5%O₂)条件下对hiPSC进行为期20天的中胚层序贯诱导;

第10天关键切换:撤除髓系分化因子,加入IL-7启动淋系细胞发育;

制备颗粒微凝胶,与细胞聚集体充分混匀,分装至96孔板,离心压实微凝胶;

第21天完成初次谱系鉴定;第21~35天转为常氧培养,促进T/B淋巴细胞成熟、骨基质矿化。

4.注意事项:

前20天必须严格维持5%低氧,常氧培养会直接导致成骨龛发育失败、淋系细胞无法生成;

淋系诱导窗口期严格锁定在第10天,过早/过晚加入IL-7都会造成T/B祖细胞丰度大幅下降;

颗粒微凝胶必须离心压实,松散状态下无法形成管状血管网络;

全程不添加外源性血清,避免基质细胞谱系紊乱。


模块2:高通量颗粒微凝胶体系优化

1.核心操作要点

将整块水凝胶机械破碎为微米级颗粒,用量较传统块状包埋减少80%;

胞-微凝胶混合体系直接分装至96/384孔板,全程无需手动挑取、剥离类器官;

平行设置块状水凝胶对照组,保证细胞谱系组成无差异。

2.注意事项

禁止使用超声破碎微凝胶,超声会破坏水凝胶结构,丧失三维支撑能力,只能采用机械剪切破碎。


模块3:造血干细胞长期传代功能验证

操作周期:共计8周(3轮连续传代,每轮培养2周)

起始细胞:健康人原代CD34+细胞/mScarlet荧光标记comBO来源CD34+细胞;

接种密度:每枚类器官接种100个CD34+细胞;

培养条件:无外源生长因子的基础培养基;

传代流程:培养14天→解离类器官→分选CD34+细胞→接种至新的空白comBO,连续传代3次。

注意事项:传代全程严禁补充SCF、IL-6等造血细胞因子,否则无法证明类器官基质自身造血支持功能。


模块4:多发性骨髓瘤嵌合类器官(MM-comBO)建模

1.操作周期

细胞植入窗口:comBO分化第21天;

嵌合培养周期:14~28天。

2.分组干预方案

实验组:comBO植入CD138+骨髓瘤原代细胞(CellTraceViolet荧光标记);

阳性对照:comBO植入健康供体CD34+细胞;

空白对照:未植入肿瘤细胞的空载comBO;

药物干预亚组:植入第5天加入MIF抑制剂ISO-1(低剂量7.5μM、高剂量15μM),每72小时给药一次;阳性药对照组:10nM硼替佐米。

3.检测指标与技术手段

细胞增殖:CellTraceViolet流式荧光稀释实验;

细胞表型:流式细胞术检测CD38、CD138、Ki67;

病理形态:H&E石蜡切片、共聚焦免疫荧光染色;

炎症因子:Luminex液相芯片检测TNF-α、IL1-RA、PDGF等;

转录组:单细胞RNA测序+Xenium空间转录组(患者骨髓活检样本);

细胞互作:CellChat配体-受体互作分析。


模块5:MIF靶点因果验证

细胞模型:AMO-1骨髓瘤细胞,构建MIFCRISPR敲除克隆;

干预方案:将MIF敲除/野生型AMO-1细胞植入comBO,培养7天后收集上清;

检测指标:Luminex定量IL6、IL1RA、PDGF-AA炎症因子水平。


结果分析


1.hiPSC来源comBO构建方案的建立与验证

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结果:成功建立低氧双阶段诱导方案,第35天同步生成淋系、髓系、血管、成骨多谱系;单细胞转录组证实细胞转录谱与成人骨髓高度同源;谱系追踪证明HSC可双向分化为淋系与髓系细胞。

结论:comBO可在单种类器官内构建完整多龛骨髓微环境,细胞成熟度接近成体骨髓。


2.高通量颗粒状微凝胶法制备comBO的建立与验证

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结果:颗粒微凝胶替代块状水凝胶后,细胞谱系组成、血管结构无丢失;体系兼容96孔板高通量培养,无需人工剥离类器官。

结论:颗粒微凝胶方案解决了传统培养难以规模化的技术瓶颈,保证模型重复性。


3.comBO来源细胞的功能验证

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结果:原代CD34+细胞可连续传代3次、维持8周淋-髓造血潜能;comBO来源T祖细胞可在胸腺类器官中发育为成熟T细胞;动态血流可促进血管网络复杂化。

结论:comBO基质龛可长期维持造血干细胞干性,具备完整的造血支持生理功能。


4.comBO支持原代多发性骨髓瘤细胞植入

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结果:3例患者CD138+浆细胞可在comBO内持续增殖,稳定维持浆细胞表型;单细胞测序重现骨髓瘤诱导的基质细胞丰度改变。

结论:comBO可作为全人源离体平台,支持原代肿瘤细胞长期培养,复刻肿瘤-微环境相互作用。


5.多发性骨髓瘤植入的comBO重现复杂疾病病理特征

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结果:MM-comBO中MSC、骨谱系细胞炎症通路显著上调;脂肪细胞数量显著增多;中性粒细胞、巨噬细胞释放大量促炎因子,基质细胞发生癌相关成纤维细胞活化。

结论:嵌合类器官完整重现骨髓瘤骨髓炎症、脂质代谢紊乱、骨稳态失衡的病理表型。


6.细胞间相互作用分析揭示骨髓瘤微环境重塑机制与潜在治疗靶点

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结果:CellChat分析筛选出MIF-(CD74+CD44)为骨髓瘤细胞与髓系免疫细胞间最核心互作通路;Xenium空间转录组证实患者骨髓中浆细胞是MIF信号主要来源;ISO-1药物抑制与MIF基因敲除均可显著降低炎症因子分泌,抑制肿瘤增殖且无明显骨髓毒性。

结论:浆细胞分泌的MIF是骨髓瘤炎症微环境的关键驱动因子,MIF抑制是低毒有效的潜在治疗策略。


文献创新点


1.多谱系同步分化方案(解决谱系单一缺陷):采用5%生理低氧+双阶段细胞因子调控,在同一类器官内同时诱导出成骨基质、血管内皮、髓系细胞、T/B淋系祖细胞,打破旧模型只能支持髓系造血的局限。

2.颗粒状微凝胶三维支架(解决规模化难题):将整块水凝胶机械破碎为微粒,替代传统块状包埋;无需人工剥离类器官,水凝胶用量减少80%,兼容96/384孔板高通量培养,大幅提升实验重复性。

3.无外源性细胞因子长期造血维持体系(解决干细胞体外失活问题):comBO自身基质细胞可分泌造血支持因子,无需额外添加细胞因子即可支持CD34+造血干祖细胞连续3次传代、维持8周淋-髓双向分化潜能。


参考文献:comBO: A combined human bone and lympho myeloid bone marrow organoid for preclinical  modeling of hematopoietic disorders



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