IL-1β诱导软骨细胞炎症模型:浓度、时间点和检测指标怎么选?
时间:2026-07-15 阅读:106
IL-1β 诱导软骨细胞炎症模型,是 OA 体外机制研究中常用的细胞模型。
它主要用于观察软骨细胞在炎症刺激下的变化,包括炎症因子升高、软骨基质合成下降、基质降解增强、细胞损伤加重等。
这个模型适合回答:
·药物是否能减轻软骨细胞炎症?
·外泌体或材料浸提液是否有保护作用?
·某个基因或通路是否参与 OA 相关基质降解?
·动物实验中的软骨退变结果,能否在体外进一步验证?
1. 炎症反应
常用指标:
·IL-6
·TNF-α
·COX-2
·iNOS
·PGE2
·NO
这些指标用于判断炎症刺激是否建立成功。
2. 软骨基质代谢
常用指标:
·COL2
·Aggrecan
·SOX9
·MMP13
·ADAMTS5
·MMP3
一般来说,IL-1β 刺激后:
·COL2、Aggrecan、SOX9 下降;
·MMP13、ADAMTS5、MMP3 升高。
前者代表软骨基质合成和软骨表型,后者代表基质降解。
3. 细胞损伤
根据课题需要,可增加:
·CCK-8
·ROS
·凋亡
·线粒体膜电位
·Bax/Bcl-2
·Cleaved caspase-3
如果研究方向涉及氧化应激、凋亡、线粒体损伤或细胞保护,这部分指标不能少。
1. 优先推荐原代软骨细胞:原代软骨细胞更接近体内状态,适合做 OA 炎症、软骨基质代谢、药物保护和机制验证。
常用来源:
·小鼠原代软骨细胞
·大鼠原代软骨细胞
·兔原代软骨细胞
如果动物实验用小鼠 DMM 模型,体外建议优先选小鼠原代软骨细胞。
如果动物实验用大鼠 MIA 或 ACLT 模型,体外可考虑大鼠原代软骨细胞。
2. 细胞代次
建议使用低代次细胞。
一般建议:
·P0–P2:更适合关键机制实验;
·P3–P5:可用于部分功能验证;
·传代过久:软骨细胞容易去分化,不建议用于关键结论。
软骨细胞传代后可能逐渐变成梭形或成纤维样,COL2、Aggrecan 等软骨表型会下降。在正式实验前建议先观察形态和贴壁状态。
常用预实验梯度可以这样设:

判断浓度是否合适,要同时看两件事:
1. 模型是否起来
表现为:
·IL-6、COX-2、iNOS 升高;
·MMP13、ADAMTS5 升高;
·COL2、Aggrecan 下降。
2. 细胞是否还能用
需要避免:
·细胞大量死亡;
·贴壁明显变差;
·CCK-8 明显下降过多;
·后续干预没有改善空间。
合适的浓度不是刺激越强越好,而是要能形成稳定炎症状态,同时保留干预窗口。
不要所有实验都默认 24 h,不同指标出现时间不同,建议按目的选择时间点。

先做浓度摸索:
0、1、5、10、20 ng/mL,刺激 24 h。
再做时间摸索:
选定浓度后,设置 0、6、12、24、48 h。
正式实验中,通常选择:
·通路实验:0.5 h、1 h、2 h、6 h;
·炎症因子:6 h、12 h、24 h;
·基质降解:24 h、48 h;
·细胞活性/凋亡/ROS:24 h、48 h。
基础实验至少设置 4 组:

如果是药物、外泌体或材料浸提液,建议增加剂量梯度:
·低剂量
·中剂量
·高剂量
如果是基因干预,建议设置:
·si-NC / vector 对照
·siRNA / 过表达组
·IL-1β + si-NC
·IL-1β + siRNA 或过表达
·必要时增加 rescue 组
如果要做机制文章,建议加上抑制剂、激动剂、敲低或过表达验证。
1. 建模是否成功
推荐组合:
·CCK-8
·IL-6
·COX-2
·iNOS
·MMP13
·ADAMTS5
·COL2
·Aggrecan
这个组合可以判断炎症是否起来、基质降解是否增强、细胞状态是否还能支撑后续实验。
2. 看抗炎作用
推荐指标:
·IL-6
·TNF-α
·COX-2
·iNOS
·PGE2
·NO
·p-p65 / p65
·p-IκBα / IκBα
常用方法:
·qPCR
·WB
·ELISA
·IF
·NO 检测
3. 看软骨保护作用
推荐指标:
·COL2
·Aggrecan
·SOX9
·MMP13
·ADAMTS5
·MMP3
常用方法:
·qPCR
·WB
·免疫荧光
·免疫组化
·细胞形态观察
如果干预有效,通常希望看到:
·COL2、Aggrecan、SOX9 回升;
·MMP13、ADAMTS5 下降;
·细胞状态改善。
4. 看细胞损伤
推荐指标:
·CCK-8
·ROS
·Annexin V/PI 凋亡
·线粒体膜电位
·Bax
·Bcl-2
·Cleaved caspase-3
适合用于药物保护、外泌体保护、氧化应激、线粒体损伤等方向。
5. 看机制通路
常见组合:

1. 只想建立炎症模型
建议:
·IL-1β 梯度:0、1、5、10、20 ng/mL;
·时间点:24 h;
·检测:CCK-8、IL-6、COX-2、MMP13、COL2。
2. 做药物保护作用
建议分组:
·Control
·IL-1β
·药物单独处理
·IL-1β + 药物低剂量
·IL-1β + 药物中剂量
·IL-1β + 药物高剂量
推荐检测:
·CCK-8
·IL-6、COX-2、iNOS
·COL2、Aggrecan
·MMP13、ADAMTS5
·IF 或 WB 验证关键蛋白
3. 做外泌体或材料浸提液
建议先做:
·细胞毒性;
·剂量梯度;
·摄取实验或作用时间摸索;
·再进入 IL-1β 模型。
推荐检测:
·CCK-8
·炎症因子
·基质代谢指标
·免疫荧光
·qPCR/WB
4. 和动物模型结果对应
动物端常见指标:
·番红固绿
·OARSI 评分
·COL2
·Aggrecan
·MMP13
·ADAMTS5
·IL-1β
·TNF-α
细胞端建议检测同一批核心指标:
·COL2
·Aggrecan
·MMP13
·ADAMTS5
·IL-6
·COX-2
·iNOS
这样动物组织结果和体外机制结果能对应起来,不会变成两套互不相关的数据。
1. 只用 10 ng/mL、24 h 可以吗?
可以作为起点,不建议直接作为最终方案;正式实验前最好做浓度和时间摸索。
2. 细胞死得越多,模型越成功吗?
不是,IL-1β 模型重点是炎症和基质代谢失衡,不是把细胞杀死。
如果细胞死亡太多,后续结果可能变成非特异性损伤。
3. 只做 qPCR 够不够?
建议至少做到:
·qPCR 看 mRNA;
·WB 或 IF 看蛋白;
·必要时加 ELISA 或功能检测。
4. 干预单独处理组要不要做?
建议做,这样可以判断干预本身是否影响细胞活性、炎症基线或软骨表型。
5. 软骨细胞代次重要吗?
重要,传代越久,软骨细胞越容易去分化。关键实验建议使用低代次细胞。

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