诱发性全脑缺血模型

实验方法
SD大鼠，雌雄不拘，体重为250～300g。经腹腔注射水合氯.醛(350～400mg/kg体重的剂量)或戊巴bi妥钠(50～60mg/kg体重的剂量)麻醉后，仰卧位固定，剃除颈部毛发，手术区域皮肤常规消毒。颈前正中切口，分离双侧颈总动脉(carotis communis artery, OCA)，夹闭双侧CCA，同时合并低血压以减少脑血流量，造成急性脑缺血。由于啮齿动物(沙土鼠除外)脑血液循环有较人类丰富的侧支循环，仅结扎双侧CCA不足以明显降低脑血流量(CBF)，因此必须结合降压药三甲噻吩、酚妥拉明或静脉放血等方法使动脉血压降低至50mmHg(6.7kPa)，使CBF降低至正常的5％～15％。放血方法：由颈静脉插管至右心房，供放血并连续记录EEG。采用抽血的方法放血，失血达80mmHg(10.7kPa)时结扎双侧颈动脉，再继续抽血，使血压降至6.7kPa。

模型特点
操作简便，用一次性手术即可完成，阻断完全可逆，可人为控制动物呼吸。采用这种方法复制的模型，能进行缺血再灌流损伤的研究，模拟了临床上休克、心功能不全、脑血管严重狭窄或阻塞合并血液低灌流引起的脑循环障碍，造成不同程度的脑组织缺血损伤。因而，对于探讨人类缺血性脑损伤的发病规律，评价抗脑缺血药物的疗效等有价值。缺点是：①模型不能在清醒动物上复制，无法研究血管狭窄后行为学的变化。②常因存在侧支循环而造成缺血不完全，部位不宜确定。③脑缺血时限长，有时导致脑缺血后抽搐、癫癎等并发症的发生。且由于低血压状态，可干扰其他器官、组织的供血和实验结果。此方法除可用于大鼠外，也可用于兔、猫和猴的完全性脑缺血。

需确认的信息
1. 模型种属（大鼠还是小鼠或是其他种属）
2. 动物体重有无要求，年龄有无要求
3. 雌雄有无要求
4. 模型构建具体方案
5. 取材要求（采血、取组织样本）