鼠脊髓损伤

       脊髓损伤模型种类繁多，各有其优缺点，在应用时应根据具体实验研究目的和条件作出科学的选择。目前，国内脊髓损伤实验研究最常选用的动物是大白鼠、兔、猫、犬。体型较大的动物在实际的实验操作中存在如下不利因素：手术操作步骤相对复杂，切口容易感染，容易死于术后的脊髓损伤并发症，一定程度影响了实验结果。大鼠作为一种价格便宜、容易饲养的动物，作为制作脊髓损伤模型还有如下特点：再现性好；临床相关性好；与人类高度同源性；重复性强；适应范围广；操作简单；死亡率低等。

大鼠脊髓损伤（全断）动物模型的建立：

       使用眼科剪直接剪断大鼠胸椎T10处脊髓的方法建立大鼠脊髓损伤模型，实验动物术前6h禁食；

实验器材：

       弯镊1把、中号手术剪1把、眼科剪1把、止血钳1把、自制辅助弯钩、4-0缝线、缝合针、医用碘伏、干棉球、棉签、青霉素钠等。

造模过程：

       大鼠称重，采用7%水合氯醛（0.5ml/100g）腹腔注射麻醉动物，电动剃毛器剃背部毛发，取动物俯卧位固定于手术板上，医用碘伏消毒手术区皮肤。大鼠胸椎T10节段定位：触及大鼠背部，找到胸椎最高点，往上数3个棘突对应的椎体位置即为胸椎T10节段；

       在T9~11节段对应背部行正中直切口，止血钳钝性分离开口皮肤与肌肉层之间的黏膜。辅助固定钩拉开两侧皮肤，充分暴露手术区肌肉视野，眼科剪于中线（棘突边缘）两侧肌肉行直切口。如果有少量出血，使用棉签清洁手术区，眼科剪剪掉T9~11节段区域棘突及其他少量多余肌肉组织，充分暴露T9~11节段椎板。

       左手握住大鼠腋下两侧固定大鼠并使其脊柱稍往上提，右手持止血钳咬除T10节段椎板，暴露T10节段脊髓。使用自制辅助弯钩（1ml注射器制作）伸入暴露的T10节段脊髓下方，稍向上挑起脊髓。使用眼科剪完全剪断挑起的T10节段脊髓，但要小心操作，不要伤到其他组织，伤口处洒少量青霉素钠消炎。

        缝合内层肌肉和创口皮肤（逐层缝合），止血钳夹闭缝合处皮肤，酒精棉球，干棉球擦净创口周围血迹并消毒，将大鼠俯卧位放回笼中，正常饮食饲养。

术后护理：

       模型构建成功后，大鼠出现后肢功能障碍且不能自主排尿，所以后期每天需要人工辅助其排尿，并使用75%酒精喷洒消毒，此护理过程需要花费大量时间。术后第二天，如果伤口愈合情况良好，可以对模型大鼠进行人工辅助排尿。

操作方法：

       实验人员双手戴上棉布厚手套，左手以麻醉大鼠的手法抓取固定大鼠（但是需注意不要过度用力，以免挤压到背部伤口或大鼠胸腔），右手手掌托住大鼠腹背部，右手食指摸索找到膀胱，适当用力挤压膀胱，尿液就会从尿道流出。术后需每天排尿一次，并使用75%酒精在尿道附近喷洒消毒，卫生纸擦拭干净尿道周围污渍。如果护理情况良好，一般术后一周，大鼠会恢复自主排尿功能。前期护理过程中，大鼠可能会尿血，属正常现象。